细胞因子信号传导抑制蛋白(suppressor of cytokine signaling,SOCS)是近几年才发现的一类新型免疫蛋白分子,主要包括8个成员,即SOCS-1—SOCS-7和CIS.在SOCS家族中最受关注和研究最多的是SOCS-1.为了研究SOCS-1在急性和慢性髓性白血病患者中的表达,进一步研究SOCS-1与白血病的关系,我们应用RT-PCR的方法检测SOCS-1 mRNA在急性和慢性髓性白血病患者外周血单个核细胞中的表达,初步探讨其临床意义.
　　材料和方法
　　临床资料
　　本研究选择华中科技大学同济医学院同济医院血液科2005年1月至2005年12月间收治的50例白血病患者.急性髓性白血病（AML）25例,其中M1型2例,M2型6例,M3型7例,M4型4例,M5型5例,M6型1例；慢性髓性白血病（CML）25例,其中慢性期12例,加速期6例,急变期7 例.50例病人中男29例,女21例,年龄16-67岁,中位年龄31岁.所有患者均经细胞形态学、免疫学、细胞遗传学、分子生物学检查确诊,采用MICM分型.以5名正常人和5例良性血液病患者(缺铁性贫血3例,巨幼细胞性贫血2例)作对照,其中男性6例,女性4例,年龄11-56岁,中位年龄26岁.
　　病例分组
　　50例患者根据临床诊断分为2组：急性髓性白血病组和慢性髓性白血病组；慢性髓性白血病再分为无进展组（慢性期）和进展组（加速期、急变期）；分析CML患者临床资料时,根据是否表达SOCS-1 mRNA分为2组,简称为阴性组和阳性组.
　　白血病治疗方案及疗效评价
　　AML 诱导化疗采用标准DA方案［(柔红霉素（40-60）mg/d×3天、阿糖胞苷100-200 mg/（m2·d）×7天］,对AML-M3患者用维甲酸（ATRA）或三氧化二砷进行诱导治疗；缓解后巩固治疗用HA、DA、MA以及大剂量阿糖胞苷等方案交替化疗,AML-M3患者在维甲酸或三氧化二砷诱导缓解及维持治疗的基础上应用上述化疗方案交替治疗,标准化疗2个疗程以上未达到完全缓解者为难治性白血病病例.
　　CML 慢性期采用羟基脲和（或）阿糖胞苷（50-100）mg/d×10-20天联合应用干扰素α（300万U-500万U,肌肉注射,隔日1次,疗程半年到1年）治疗,8例患者采用格列卫（600 mg/d）治疗.所有患者治疗前行染色体检查,半年后复查骨髓像及染色体,评价治疗效果,Ph染色体阳性率35%-90％为轻微细胞遗传学反应,Ph染色体阳性率1%-34％为部分细胞遗传学反应,0％为完全细胞遗传学反应.加速期和急变期患者根据病情进展的类型采用联合化疗.
　　试剂和仪器
　　所用TRIZOL试剂购自Invirtrogen公司,逆转录试剂盒购自MBI公司,引物设计参照文献［1］进行.SOCS-1上游引物： 5’-CACGCACTTCCGCACATTCC-3’,下游引物：5’-TCCAGCAGCTCGAAGAGGCA-3’,扩增片段大小为280 bp；GAPDH上游引物：5’-GCTGGCGCTGAGTACGTCGT-3’,下游引物：5’-TGGGTGTCGCTGTTGAAGTC-3’,扩增片段大小为604 bp,由上海博亚公司合成.DL2000 Marker购自TaKaRa公司.


　　RT-PCR检测
　　总RNA纯化提取
　　取外周血3-5 ml,枸橼酸钠抗凝,用相对密度为1.077的淋巴细胞分离液分离单个核细胞,加入1ml TRIZOL,按试剂说明书中操作步骤提取RNA.使用分光光度仪检测抽提总RNA的质量和浓度,要求A260/A280的比值在2.0左右,并记录RNA含量. 
    cDNA的合成
　　反应体系20 μl.每1份标本取RNA 2 μg,Oligo（dT）1 μl,5×反应缓冲液4 μl,RNA核酸酶抑制剂1 μl,10 mmol/L dNTP 2 μl,MMLV 1 μl,加DEPC处理的双蒸馏水至20 μl.25℃ 10分钟,42℃ 60分钟,70℃ 10分钟进行逆转录,合成好的cDNA置于-80℃保存备用.
　　RT-PCR反应
　　反应体系： 10×buffer 2 μl,2×dNTP 2 μl,Taq酶 0.5 μl,MgCl2 1.2 μl,双蒸馏水10.3 μl,前引物1 μl,后引物1 μl,配成18 μl的反应混合物,再加入模板DNA 2 μl,配成20 μl的反应体系,在PTC-100 PCR扩增仪上反应.反应条件： 94℃预变性3分钟,94℃变性45秒,58℃退火45秒,72℃延伸45秒,循环35次,最后72℃延伸5分钟,终止反应.在GeneGenius成像系统下观察结果.
　　统计学处理
　　使用SAS 9.0软件进行统计分析.
　　结 果
　　25例急性髓性白血病患者中,4例检测出SOCS-1 mRNA（图1）,阳性率16.00 %,25例慢性髓性白血病患者中,11例检测出SOCS-1 mRNA,阳性率44.00 %（表1）,经卡方检验,χ2 =4.6667,P=0.031.AML与CML两组表达SOCS-1 mRNA阳性率的差异有统计学意义.
    25例CML患者中,无进展组12例,SOCS-1 mRNA阳性2例,进展组13例,阳性9例（加速期4例,急变期5例）（表2）,两组之间比较,P=0.015（Fisher确切概率法）,差异有统计学意义(图2).
　　对照组的正常与良性血液病患者中未检测到SOCS-1 mRNA的表达.
　　分析25例CML患者临床资料,比较SOCS-1 mRNA阴性和阳性两组之间干扰素联合化疗的治疗反应,结果阳性组有效3例,阴性组有效11例（P<0.05,Fisher确切概率法).疗程结束后评价细胞遗传学反应情况,多数呈现轻微细胞遗传学反应,SOCS-1 mRNA持续阳性表达,预后极差.对于急性白血病,由于阳性例数过少,不能准确分析其与治疗反应的关系.
　　讨论
　　SOCS在细胞因子诱导下产生,反过来抑制细胞因子的信号转导,成为细胞因子信号转导负反馈调控环的一部分［2,3］.SOCS蛋白在体内可阻断增强的细胞因子效应,它不仅是细胞因子的调节者,而且在控制细胞分化和决定细胞命运方面起重要作用.SOCS-1表达失常在人类疾病,尤其是在恶性肿瘤的发病中有重要作用.
    白血病是目前发病率最高的血液系统恶性肿瘤,具有高度异质性,近年来越来越多的研究者开始关注SOCS-1与白血病的关系.本研究进行了SOCS-1与白血病关系的初步研究.结果表明,急性和慢性髓性白血病患者外周血单个核细胞中均可检测到SOCS-1 mRNA的表达,AML患者SOCS-1 mRNA表达阳性率（16.00%）,显著低于CML患者SOCS-1 mRNA表达阳性率（44.00%）.


    SOCS-1在急性髓性白血病的高表达能抑制正常的信号转导通路,导致白血病细胞的分化障碍和凋亡受阻.最近的研究发现,SOCS-1由于甲基化而表达沉默,因此SOCS-1的作用类似于肿瘤抑制基因［4］.SOCS-1基因被高甲基化后,JAK-STAT通路失去抑制,导致JAK持续活化； JAK的持续活化与肿瘤细胞的凋亡受阻有关.SOCS-1的恢复能抑制SOCS-1被甲基化的肿瘤细胞的生长,这种生长抑制是由凋亡引起.Chen等［5］研究了89例新诊断的AML患者,53例（60%）有SOCS-1的甲基化.SOCS-1的甲基化见于超过半数的AML患者,这可能与AML的细胞遗传学类型有关,在不同亚型的发生发展中有重要地位.我们实验的结果是AML组阳性率显著低于CML组,这和国外的多数研究结果一致,原因可能在于SOCS-1基因由于甲基化而沉默,不能发挥正常的负调控因子的作用,从而使机体的细胞因子网络平衡被打破,导致了白血病的发生.但在AML中,仍有少数的SOCS-1阳性病例,机理尚未明确,是否与阴性患者治疗反应不同有关,临床意义有待进一步研究.
　　国外文献报道,SOCS-1 mRNA阳性CML患者对干扰素治疗反应差,细胞遗传学缓解率低,进入加速期后呈持续阳性表达,疾病呈进行性发展,预后极差［6］.本研究结果显示,CML进展期SOCS-1 mRNA表达比稳定期明显增高,提示SOCS-1 mRNA的持续转录与慢性髓性白血病的疾病进展和治疗反应密切相关.CML在疾病的状态发生转变时,SOCS-1由沉默变为显著的阳性表达甚至过表达状态.SOCS-1的过表达可抑制众多细胞因子、激素和生长因子如IL-2、IL-3、红细胞生成素、生长激素和催乳素等的信号转导,从而成为肿瘤发病的另一重要机制.SOCS-1有可能成为CML病程转变的标志物,定量检测SOCS-1 mRNA的动态变化能否作为判断预后、甚至作为微量残留病的监测指标,这都有待我们进一步进行更大样本的定量研究.
【参考文献】
　　1 Schuringa JJ,Wierenga AT,Kruijer W,et al. Constitutive Stat3,Tyr705,and Ser727 phosphorylation in acute myeloid leukemia cells caused by the autocrine secretion of interleukin-6. Blood,2000; 95: 3765-3770
　　2 Yoshimura A. The CIS/JAB family: novel negative regulators of JAK signaling pathways. Leukemia,1998; 12:1851-1857
　　3 Hilton DJ. Negative regulators of cytokine signal transduction. Cell Mol Life Sci,1999; 55:1568-1577
　　4 Watanabe D,Ezoe S,Fujimoto M,et al. Suppressor of cytokine signalling-1 gene silencing in acute myeloid leukaemia and human haematopoietic cell lines. Br J Haematol,2004;126:726-735
　　5 Chen CY,Tsay W,Tang JL,et al. SOCS1 methylation in patients with newly diagnosed acute myeloid leukemia. Genes Chromosomes Cancer,2003; 37:300-305
　　6 Roman-Gomez J,Jimenez-Velasco A,Castillejo JA,et al. The suppressor of cytokine signaling-1 is constitutively expressed in chronic myeloid leukemia and correlates with poor cytogenetic response to interferon-alpha. Haematologica,2004; 89:42-48.