（一）细菌的收获和裂解
1 、收获
1)将2ml 含相应抗生素的LB加入到容量为15ml 并通气良好(不盖紧)的试管中,然后接入一单菌落,于30℃ 剧烈振摇下培养过夜.
2)将1.5ml 培养物倒入微量离心管中,用微量离心机于4℃以12000g 离心30 秒,将剩余的培养物贮存于4℃ .
3)吸去培养液,使细菌沉淀尽可能干燥.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,轻缓抽吸,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽可能使吸头远离细菌沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴.
2 、碱裂解法
1)将细菌沉淀,所得重悬于100μl 用冰预冷的溶液Ｉ中,剧烈振荡.
    溶液Ｉ
    50mmol/L 葡萄糖
    25mmol/L Tris -Cl(pH8.0)
    10mmol/LEDTA(pH8.0)
    溶液Ｉ可成批配制,每瓶约100ml, 在10lbf/in2(6.895×104Pa) 高压下蒸气灭菌15分钟,贮存于4℃.须确使细菌沉淀在溶液Ｉ中完全分散,将两个微量离心管的管底部互相接触震荡,可使沉淀迅速分散.
2)加200μl 新配制的溶液 Ⅱ .
    溶液 Ⅱ
    0.2mol/L NaOH（临用前用10mol/L 贮存液现用现稀释）
    1%SDS
    盖紧管口,快速颠倒离心管5次,以混合内容物.应确保离心管的整个内表面均与溶液Ⅱ接触.不要振荡,将离心管放置于冰上.
3)加150μl 用冰预冷的溶液Ⅲ
    溶液 Ⅲ
    5mol/ L乙酸钾 60ml
    冰乙酸 11.5ml
    水 28.5ml
    所配成的溶液对钾是3mol/L ,对乙酸根是5mol/L .
    盖紧管口,将管倒置后和地振荡10秒钟溶液 Ⅲ 在粘稠的细菌裂解物中分散均匀,之后将管置于冰上3－5分钟.
4)用微量离心机于4℃ 12 000g 离心5分种,将上清转移到另一离心管中.
5)可做可不做：加等量酚:氯念, 振荡混匀, 用微量离心机于4℃ 以12000g 离心2分钟,将上清转移到另一良心管中.有些工作者认为不必用酚:氯仿进行抽提,然而由于一些未知的原因,省略这一步,往往会得到可耐受限制酶切反应的DNA.
6)用 2 倍休积的乙醇于室温沉淀双锭DNA.振荡混合,于室温放置2分钟.
7)用微量离心机于4 ℃以12 000g 离心5分钟.
8)小心吸去上清液,将离心管倒置于一张纸巾上,以使所有液体流出.再将附于管壁的液滴除尽.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽量使吸头远离核酸沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴.


9)用 1ml70% 乙醇于4 ℃ 洗涤双链DNA 沉淀,按步骤8)所术方法去掉上清,在空气中使核酸沉淀干燥10分钟.
    i. 此法制备的高拷贝数质粒（如Ｘ f3 或pUC),其产量一般约为：每毫升原细菌培养物3－5μg .
    ii ．如果要通过限制酶切割反应来分析DNA,可取1μl DNA 溶液加到另一含8μl 水的微量离心管内,加1μl 10× 限制酶缓冲液和1单位所需限制酶, 在适宜温育1－2小时.将剩余的DNA 贮存于－20 ℃ .
    iii. 此方法按适当比例放大可适用于100ml 细菌培养物：
3 、煮沸裂解
1)将细菌沉淀,所得重悬于350μlSTET 中.
    STET
    0.1mol/L NaCL
    10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)
    1mmol/L EDTA(pH8.0)
    5% Triton X-100
2)加25μl 新配制的溶菌酶溶液[10mg/ml, 用10mmol/L Tris.Cl(pH8.0) 配制] ,振荡3 秒钟以混匀之.如果溶淮中pH 低于8.0 ,溶菌酶就不能有效发挥作用.
3)将离心管放入煮沸的水浴中,时间恰为40 秒.
4)用微量离心机于室温以12 000g 离心10 分种.
5)用无菌牙签从微量离心管中去除细菌碎片.
6)在上清中加入40μl 5mol/L 乙酸钠(pH5.2)和420μl 异丙醇,振荡混匀,于室温放置5 分钟.
7)用微量离心机于4 ℃以12 000g 离心5 分种,回收核酸沉淀.
8)小心吸去上清液,将离心管倒置于一张纸巾上,以使所有液体流出.再将附于管壁的液滴除尽.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,轻缓抽吸,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽可能使吸头远离核酸沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管的液滴.
9)加1ml 70％乙醇,于4℃以12 000g 离心2分钟.
10)按步骤 8)所述再次轻轻地吸去上清,这一步操作要格外小心,因为有时沉淀块贴壁不紧,去除管壁上形成的所有乙醇液滴,打开管口,放于室温直至乙醇挥发殆尽,管内无可见的液体(2－5)分钟.
11)用50μl含无DNA 酶的胰RNA酶(20μg/ml)的 TE(pH8.0) 溶解核酸稍加振荡,贮存于-20℃ .
    注：当从表达内切核酸酶Ａ的大肠杆菌株(endA+ 株,如 HB101)中小量制粒尤其DNA时,建议舍弃煮沸法.因为煮沸步骤不能完全灭活内切核酸酶A,以后在Mg2+ 存在下温育(V 中用限制酶时)质粒DNA可被降解. 在上述方案的步骤9之间增加一步,即用酚：氯仿进行抽提,可以避免这一问题.

（二）质粒DNA小量制备的问题与对策
    裂解和煮佛法都极其可靠,重复性也很好,而且一般没有会么麻烦.多年来,在我们实验室中日常使用这两种方法的过程中,只碰到过两个问题：
1)有些工作者首次进行小量制备时,有时会发现质粒DNA不能被限制酶所切割,这几乎总是由于从细菌沉淀或从核酸沉淀中去除所有上清液时注意得不够.大多数情况下,用酚：氯仿对溶液进行抽提可以去除小量备物中的杂质.如果总是依然存在,可用离心柱层析注纯化DNA.
2)在十分偶然的情况下,个别小时制备物会出现无质粒DNA的现象.这几乎肯定是由于核酸沉淀颗粒已同乙醇一起被弃去.

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